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【前沿进展】“现货”CAR-T细胞疗法引领全球浪潮

2021-03-24 10:48    浏览量:2440

同种异体CAR-T细胞(UCAR-T),又称现货CAR-T疗法,基本的生产流程为(图1):首先从健康供体内分离T淋巴细胞,通过病毒载体将CAR基因和其他基因(如自杀基因和共刺激受体等)转导入T细胞中,并利用基因编辑技术敲除会引起移植物抗宿主反应(GvHD)和免疫系统排斥的相关基因(TCRHLA等),然后使用抗CD3 /CD28的磁珠或细胞因子等刺激扩增T细胞,经严格质检、分装、冷冻储存后,随时供患者使用。


1 UCAR-T制备流程[1]

UCAR-T相比于自体CAR-T,在细胞来源、生产制造过程、临床表现以及价格等方面均有不同(图2)。

总体来说,UCAR-T主要有以下突出特点

1)可现货供应,无需漫长的制备等待时间,有效避免因等待过程长而导致的其他风险;

2)产品原料T细胞来自健康供者,经过严格的筛查程序,T细胞活性强,可有效避免肿瘤污染;

3)适应范围广,患者无因制备失败或因不符合制备标准而丧失治疗机会;

4)可按照GMP标准生产过程质量控制,产品质量可控;

5)工业化生产,可有效降低成本及治疗费用,减轻个人及社会医疗负担,扩展可及性。


2  UCAR-T和自体CAR-T的区别[2]



UCAR-T企业布局

UCAR-T因其突出的优势,使得全球多家企业争先布局UCAR-T细胞疗法的研发管线,但不同于自体CAR-T疗法在临床应用中遍地开花的局面,目前进入临床开发的UCAR-T企业还很少(图3[1],一般是拥有核心基因编辑技术平台的企业,比如国外的CellectisPrecisionCelyad,国内的亘喜生物、邦耀生物、北恒生物等UCAR-T研发企业。
国外UCART企业:
1Cellectis法国 Cellectis 拥有目前全球临床进展最快的UCART疗法。包括四个靶点的研发管线,分别为CD19CD123CD22以及CS1,其中UCART19项目与PfizerServier等多家公司授权合作。
2Poseida Therapeutics专注于开发新型CAR-T疗法的Poseida,利用非病毒piggyBac(PB)DNA转座技术和CAS-Clover基因编辑系统等先进技术平台,开发了P-BCMA-ALL01P-MUC1C-ALLO1P-PSMA-ALLO1Dual CAR (CD19/CD20)等一系列通用型CAR-T产品。
3CRISPR TherapeuticsCRISPR Therapeutics采用CRISPR基因编辑技术开发的靶向BCMACD70UCAR-T细胞疗法具有编辑率高、特异性好、细胞杀伤力强的特性。
4Celyad该公司的CYAD-101(靶向NKG2DL)是第一个非基因编辑的UCAR-T临床项目。CYAD-101CAR不含识别肿瘤表面抗原的抗体片段,而是包含完整的人类NKG2D 受体,CYAD-101与化疗联合治疗的情况下显出非常低的脱靶效应。
5Precision BioSciencesPrecision利用基于ARCUS基因编辑核心技术平台布局了多条UCAR-T研发管线,其中PBCAR0191PrecisionServier共同开发的第一款靶向CD19UCAR-T产品,目前处于临床I期阶段。
国内UCART企业:
1)亘喜生物:亘喜生物开发的TruUCAR专利技术,使得同种异体CAR-T细胞可在HLA不匹配的患者体内增殖并持续存在,同时可以控制GvDH的风险。GC027是亘喜生物在研的一款UCAR-T细胞疗法,能够靶向CD7抗原表达的肿瘤细胞,用于治疗T细胞恶性肿瘤。
2)北恒生物:CTA101是北恒生物利用CRISPR/Cas9基因编辑技术,开发的一款CD19/CD22双靶点UCAR-T细胞疗法,数据提示其具有良好的耐受性以及强效的抗肿瘤作用。
3)邦耀生物:邦耀生物也搭建了成熟的基因编辑和细胞治疗产品研发平台,目前公司已布局靶向CD19BCMAPSMA等靶点的UCAR-T研发管线。

3 全球UCAR-T领先企业研发产品汇总[1]


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结语

UCAR-T有明显突出优势的同时也具有较高的技术壁垒,所以在实际应用中仍存在一些关键性问题,比如微量的TCR阳性CAR-T细胞引起的GvDH反应、基因编辑存在的脱靶效应、免疫系统排斥导致UCAR-T细胞在体内不易扩增等一系列技术难点,并且当前大多数UCAR-T研发项目均处在临床前或临床早期阶段。因此期待更加完善的技术手段和更丰富的临床研究数据来保证UCAR-T细胞疗法安全性和有效性。


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验证数据

流式验证数据


1e6 of the anti-CD19 CAR-293 cells were stained with 100 μL of 1:50 dilution (2 μL stock solution in 100 μL FACS buffer) of PE-Labeled Human CD19 (20-291), His Tag (Cat. No.CD9-HP2H3). PE Streptavidin was used as negative control (QC tested).

点击申请Protocol



1e6 of the anti-SLAMF7 CAR-293 cells were stained with 100 μL of 1:50 dilution (2 μL stock solution in 100 μL FACS buffer) of PE-Labeled Human SLAMF7, His Tag (Cat. No.SL7-HP2H3) and negative control protein respectively, PE signals was used to evaluate the binding activity (QC tested).

点击申请Protocol



293 cells were transfected with anti-CD22-scFv and RFP tag. 2e5 of the cells were stained with FITC-Labeled Human Siglec-2, His Tag (Cat. No. SI2-HF2H6, 10 µg/mL) and FITC-labeled Protein Control. Non-transfected 293 cells and FITC-labeled Protein Control were used as negative control. RFP was used to evaluate CAR (anti-CD22-scFv) expression and FITC was used to evaluate the binding activity of FITC-Labeled Human Siglec-2, His Tag (Cat. No. SI2-HF2H6) (QC tested).

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邮件:inquiry@acrobiosystems.com

电话:18811625790

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参考文献

[1] Depil, S., Duchateau, P., Grupp, S.A. et al. ‘Off-the-shelf’ allogeneic CAR T cells: development and challenges. Nat Rev Drug Discov 19, 185–199 (2020).

[2] 各公司官网;

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